Parmi les maladies infectieuses humaines les plus fréquentes, les infections urinaires représentent un problème important de santé publique en termes de morbidité et de coût. L’agent étiologique isolé dans les infections urinaires non compliquées est presque exclusivement Escherichia coli [1]. L’épithélium urinaire constitue une barrière fortement imperméable et un environnement hostile aux bactéries qui ne le colonisent normalement pas. Les souches d’UPEC (uropathogenic E. coli) ont acquis la capacité de coloniser cet épithélium, propriété conférée par un ensemble de facteurs de virulence comprenant des facteurs d’attachement de type P-fimbriae et des exotoxines. Ainsi, les toxines hémolysine-α et facteur cytotoxique nécrosant-1 (CNF1) caractérisent respectivement 40 % et 30 % des UPEC [2]. Le gène cnf1 est aussi retrouvé dans 10 % des souches E. coli K1 responsables de méningites ainsi que chez Yersiniapseudotuberculosis (pour revue, voir [3]). La toxine CNF1 possède une structure classique composée de trois domaines fonctionnels, chacun responsable d’une des trois étapes du processus d’intoxication [4]. Le tiers amino-terminal de CNF1 confère la capacité de liaison de la toxine à un récepteur de la membrane de la cellule hôte. Cette association permet à la toxine de pénétrer dans des compartiments d’endocytose acides [5]. Cette acidité est responsable de l’insertion de la partie médiane de CNF1 dans la bicouche lipidique et de l’injection du domaine carboxy-terminal dans le cytoplasme [6]. Le domaine carboxy-terminal de CNF1, véritable composant enzymatique de la toxine, catalyse alors la désamidation de la glutamine 63 de Rho (ou 61 de Rac et CDC42) en acide glutamique [7]. Les protéines Rho appartiennent à la super-famille des petites protéines GTPasiques Ras, régulatrices de l’homéostasie cellulaire [8] ((→) m/s 2003, n° 3, p. 358). Elles fixent et hydrolysent le GTP en GDP et oscillent ainsi entre une forme respectivement active, membranaire, capable de fixer et d’activer des protéines effectrices, et une forme inactive cytosolique. La glutamine est essentielle à l’hydrolyse du GTP et sa modification par CNF1 produit donc l’activation permanente des GTPases Rho (Figure 1). CNF1 partage, avec une vingtaine de facteurs de virulence bactériens connus, la propriété biochimique de modification des GTPases Rho (pour revue, voir [3]). Les protéines Rho semblent être en amont de cascades moléculaires commandant les remaniements du cytosquelette d’actine nécessaires à la phagocytose, à la migration et à la différenciation cellulaires [8]. L’activation de Rac et de CDC42 produit la formation de projections membranaires notamment impliquées dans la phagocytose de type Fcγ alors que le contrôle de l’état de contraction de l’actine par Rho participe à la phagocytose de type complément [9]. Rac contrôle également la formation d’espèces actives de l’oxygène en réponse aux pathogènes. Il partage aussi avec Rho et CDC42 le contrôle de la régulation de la synthèse de produits inflammatoires et de molécules pro- ou anti-apoptotiques. Il est vraisemblable que la forte occurrence de facteurs de virulence dirigés contre ces protéines soit la conséquence de l’implication des protéines Rho dans les mécanismes de défense cellulaire (pour revue, voir [3]). Dans ce contexte, une activation soutenue des protéines Rho par CNF1 est toujours apparue difficile à concilier avec une vue finaliste de la physiologie bactérienne et cela d’autant plus que la majorité des toxines ciblant les protéines Rho sont connues pour les inactiver. Le travail que nous venons de publier offre une nouvelle vision du mode d’action intracellulaire de cette toxine et permet une meilleure compréhension du mode d’invasion des cellules épithéliales par les bactéries pathogènes [10]. Nous avons mis en évidence que CNF1 induit, in vivo, une activation transitoire des protéines Rho qui est corrélée avec leur déplétion. En effet, la …
Appendices
Références
- 1. Warren JW. Clinical presentation and epidemiology of urinary tract infections. In: Mobley HTL, Warren JW, eds. Urinary tract infections. Molecular pathogenesis and clinical management. Washington: American Society for Microbiology, 1996 : 3-27.
- 2. Landraud L, Gauthier M, Fosse T, Boquet P. Frequency of Escherichia coli strains producing the cytotoxic necrotizing factor (CNF1) in nosocomial urinary tract infections. Lett Appl Microbiol 2000; 30: 213-6.
- 3. Boquet P, Lemichez E. Bacterial virulence factors targeting Rho GTPases: parasitism or symbiosis. Trends Cell Biol 2003 (sous presse).
- 4. Lemichez E, Flatau G, Bruzzone M, Boquet P, Gauthier M. Molecular localisation of the Escherichia coli cytotoxic necrotizing factor CNF1 cell-binding and catalytic domains. Mol Microbiol 1997; 97: 1061-70.
- 5. Contamin S, Galmiche A, Doye A, Flatau G, Benmerah A, Boquet P. The p21 Rho-activating toxin cytotoxic necrotizing factor 1 is endocytosed by a clathrin-independent mechanism and enters the cytosol by an acidic-dependent membrane translocation step. Mol Biol Cell 2000; 11: 1775-87.
- 6. Pei S, Doye A, Boquet P. Mutation of specific acidic residues of the CNF1 T domain into lysine alters cell membrane translocation of the toxin. Mol Microbiol 2001; 41: 1237-47.
- 7. Flatau G, Lemichez E, Gauthier M, et al. Toxin-induced activation of the G protein p21 Rho by deamidation of glutamine. Nature 1997; 387: 729-33.
- 8. Hall A. Rho GTPases and the actin cytoskeleton. Science 1998; 279: 509-14.
- 9. Caron E, Hall A. Identification of two distinct mechanisms of phagocytosis controlled by different Rho GTPases. Science 1998; 282: 1717-21.
- 10. Doye A, Mettouchi A, Bossis G, et al. CNF1 exploits the ubiquitin-proteasome machinery to restrict Rho GTPase activation for bacterial host cell invasion. Cell 2002; 111: 553-64.
- 11. Rihet S, Vielh P, Camonis J, Goud B, Chevillard S, de Gunzburg J. Mutation status of genes encoding RhoA, Rac1, and Cdc42 GTPases in a panel of invasive human colorectal and breast tumors. J Cancer Res Clin Oncol 2001; 127: 733-8.
- 12. Galàn JE, Zhou D. Striking a balance: modulation of the actin cytoskeleton by Salmonella. Proc Natl Acad Sci USA 2000; 97: 8754-61.